RELACJA

Zapraszamy do zapoznania się z relacją z Letniej Szkoły Mikroskopii Optycznej!

RABAT 15%

Uczestnicy LSMO 2014 mają możliwość zamówienia produktów Delta Optical z rabatem 15% w czasie trwania Letniej Szkoły Mikroskopii Optycznej.

ZAPISY ROZPOCZĘTE

Zapisy zostały uruchomione. Zapraszamy do rejestracji na LSMO 2014 za pomocą formularza.

WITAMY

Zapraszamy na warsztaty mikroskopowe. Są one skierowane do profesjonalistów i zaawansowanych amatorów (powyżej 18 roku życia), którzy korzystają w pracy z mikroskopów lub dopiero do tego się przymierzają, do osób, które chcą podnieść swoje kwalifikacje w zakresie obsługi, przygotowania preparatów a zwłaszcza umiejętności wykorzystania cyfrowych kamer mikroskopowych do wizualizacji i analizy obrazu.

W tym roku LSMO ( dla profesjonalistów) będzie odbywać się w pięknej okolicy nad Zalewem Zegrzyńskim w ośrodku wypoczynkowym REWITA WDW Rynia. www.rewita.pl/wdw-rynia/o-osrodku

PIĄTEK

• Przyjazd w godz. 14.00-18.00 (UWAGA: odbiór pokoi dopiero po godz. 18.00)

• 14.00 - 18.00 - w miarę przyjazdu kolejnych uczestników (w sali konferencyjnej) – Instalacja na komputerach uczestników sterowników kamer mikroskopowych i oprogramowania sterującego kamerami oraz oprogramowania Helicon Focus Pro.
• 17.30 - Przywitanie uczestników i otwarcie LSMO.
• 18.00 – kolacja oraz odbiór pokoi.
• 19.30 – 22.00 – Warsztaty.
• 1. - „Mikroskop w służbie nauki i pasji artystycznych. Przykłady różnych zastosowań” – Małgorzata Szklorz
• 2. - Przyporządkowanie konkretnych modeli mikroskopów i kamer poszczególnym uczestnikom; uczestnicy posiadający aparat cyfrowy typu lustrzanka (DSLR) otrzymają specjalne adaptery umożliwiające podłączenie urządzenia do mikroskopu.
• 3. Historia mikroskopii, budowa, parametry – co i w jaki sposób wpływa na jakość obrazu, jak prawidłowo przygotować mikroskop do obserwacji; właściwe uzyskiwanie obrazu na różnych modelach, słaba jakość obrazu i brak kontrastu pod obiektywami 40x i 100x czyli jak czyścimy mikroskopy i obiektywy
• 4. Cyfrowe kamery mikroskopowe – wprowadzenie.
• a. Najważniejsze parametry kamer oraz oprogramowania i praktyczne ich znaczenie.
• b. Jak dopasować optymalną kamerę do danego mikroskopu (np. biologicznego, stereoskopowego, itd.) i zastosowania oraz na co zwracać uwagę przy zakupie.
• c. Przegląd kamer mikroskopowych z oferty Delta Optical.
• d. Różne typy adapterów do kamer i parametry uzyskiwanego obrazu
• 5. Fakultatywnie: Podstawy mikroskopii + praca z mikrotomem ręcznym. Wykonanie przez uczestników własnych preparatów i zarejestrowanie obrazu mikroskopowego

SOBOTA

• 8.00 – Śniadanie.
• 9.00 – 13.00 – Warsztaty technik rejestracji obrazu mikroskopowego (10 minutowe przerwy co 45 minut, czyli 9.45-9.55 i 10.55-11.05 oraz 12.05-12.15).
• 1. Montaż aparatu fotograficznego typu lustrzanka na mikroskopie – sterowanie z poziomu komputera.
• 2. Cyfrowe kamery mikroskopowe:
• a. Ustawianie optymalnego czasu ekspozycji - praktyczne wskazówki.
• b. Konfiguracja parametrów oprogramowania w celu uzyskania wiernego odwzorowania kolorów w obrazie przechwytywanym przez kamerę cyfrową.
• c. Prezentacja obrazu na żywo a rejestracja obrazów statycznych i dynamicznych - optymalizacja ustawień w celu uzyskania najlepszego rezultatu.
• d. Funkcje pomiarowe oprogramowania kamer - kalibracja względem wzorca oraz ćwiczenia praktyczne pomiarów na obrazach mikroskopowych uzyskanych przez Uczestników.
• e. Dodatkowe funkcje oprogramowania kamer oraz przykłady ich praktycznego zastosowania w obróbce i prezentacji obrazu.
• 3. Parametry i ustawienia mikroskopów a praca kamery i oprogramowania – wpływ różnych czynników na uzyskiwany ostatecznie obraz.
• 4. Prezentacja obrazu większym grupom słuchaczy - współpraca z projektorem multimedialnym mikroskopu wyposażonego w cyfrową kamerę - ważne praktyczne uwagi i wskazówki.
• 13.00 – Obiad.
• 14.30 – 15.10 - Wymiana doświadczeń - prezentacje uczestników:
  
  A. Jerzy "Plan Apo" Rojkowski - "Obserwacje przez kombinacje"
  
  

  Domowe patenty, niskobudżetowe rozwiązania i przeróbki technik obserwacyjnych stosowane w mikrofotografii, wskazówki praktyczne jak wykonywać filtry. Prezentacja kilku bardzo użytecznych udoskonaleń i modyfikacji wprowadzonych przez zaawansowanych użytkowników zajmujących się fotografią przez mikroskop (efekt skośnego światła, ciemne pole, Rheinerg, filtr uniwersalny jako alternatywa dla DIC) oraz inne, bardziej zaawansowane przeróbki oraz adaptacje różnych części do mikroskopów. Pokaz zdjęć wykonanych za pomocą wymienionych udoskonaleń, fotografie hybrydowego sprzętu, niekonwencjonalne metody dokumentacji, zdjęcia testowo-porównawcze, w tym zestawienie różnych klas obiektywów, od achromatu do plan apo.
  
  

• 15.20 – 17.30 - Techniki mikroskopowe.
• 1. Omówienie, prezentacja oraz ćwiczenia z zakresu techniki polaryzacji.
  
  Pleochroizm oraz interferencja czyli efekt barwy w świetle spolaryzowanym - Piotr Krzemiński
  
  Po spolaryzowaniu światła białego w mikroskopie polaryzacyjnym fala elektromagnetyczna zwana światłem zmienia swoją prędkość oraz ulega załamaniom przy przejściu z ośrodka gazowego (powietrza) do ośrodka stałego (minerału), w efekcie jesteśmy w stanie obserwować barwy pleochroiczne oraz interferencyjne. Moduł zajęć poświęcony jest wprowadzeniu użytkownika do świata barw obserwowanych w spolaryzowanym świetle przechodzącym.
  
  
• a. Zasady działania techniki polaryzacji.
• b. Przykłady zastosowania praktycznego techniki polaryzacji w pracy z różnymi mikroskopami: biologicznymi, stereoskopowymi i innymi.
• c. Przygotowanie mikroskopów, montaż filtrów polaryzacyjnych. Różne rozwiązania techniczne.
• d. Przygotowanie i obserwacja preparatów biologicznych, obserwacja szlifów skał i minerałów. (np. skamieniałe drewno, okrzemki w skałach, meteoryt i inne)
• e. Uzyskiwanie najlepszego obrazu mikroskopowego w technice polaryzacji – wskazówki i ćwiczenia praktyczne.
• f. Akwizycja obrazu mikroskopowego w technice polaryzacji za pomocą kamer mikroskopowych – uwagi i ćwiczenia praktyczne,
• 2. Omówienie, prezentacja oraz ćwiczenia z zakresu techniki kontrastu fazowego:
• a. Zasady działania techniki kontrastu fazowego.
• b. Przykłady zastosowania praktycznego techniki kontrastu fazowego w pracy z mikroskopem. (np. obserwacji mikroorganizmów wodnych, krwi)
  
   Obraz żywej kropli krwi w kontraście fazowym:
  
  
• c. Przygotowanie mikroskopu, montaż specjalnego kondensora oraz obiektywów (10x, 20x, 40x oraz 100x) do pracy w technice kontrastu fazowego. Różne rozwiązania techniczne (uniwersalne kondensory tarczowe oraz kondensory przesuwne).
• d. Proces centrowania pierścieni fazowych a różne rozwiązania techniczne, ustawianie prawidłowej wysokości kondensora, średnicy przysłony polowej oraz natężenia oświetlenia. Ćwiczenia praktyczne.
• e. Uzyskiwanie najlepszego obrazu mikroskopowego w technice kontrastu fazowego – wskazówki i ćwiczenia praktyczne.
• f. Akwizycja obrazu mikroskopowego w technice kontrastu fazowego za pomocą kamer mikroskopowych – uwagi i ćwiczenia praktyczne,
• 3. Omówienie, prezentacja oraz ćwiczenia z zakresu techniki ciemnego pola (tzw. „suche” i „olejowe”):
• a. Zasady działania mikroskopowej techniki ciemnego pola.
• b. Przykłady zastosowania praktycznego techniki ciemnego pola suchego i olejowego w pracy z mikroskopem biologicznym, a także technika ciemnego pola w mikroskopie stereoskopowym. (np. obserwacja mikroorganizmów wodnych, grzybów, krwi i bakterii).
• c. Przygotowanie mikroskopu biologicznego, montaż specjalnego kondensora suchego, kondensora olejowego oraz specjalnego immersyjnego obiektywu planachromatycznego 100x z ruchomą przysłoną irysową do pracy w technice ciemnego pola. Praca na różnych modelach mikroskopów.
• d. Proces centrowania kondensorów, ustawianie prawidłowej wysokości kondensora, średnicy przysłony aperturowej obiektywu 100x do ciemnego pola, przysłony polowej oraz natężenia oświetlenia. Ćwiczenia praktyczne.
• e. Uzyskiwanie najlepszego obrazu mikroskopowego w technice ciemnego pola suchego i olejowego – wskazówki i ćwiczenia praktyczne.
• f. Akwizycja obrazu mikroskopowego w technice ciemnego pola za pomocą kamer mikroskopowych – uwagi i ćwiczenia praktyczne,
• 17.30 - 18.00 - Czas wolny.
• 18.00 – Kolacja.
• 19.30 – Zajęcia fakultatywne – praca własna uczestników na wybranych mikroskopach, możliwość wykorzystania mikroskopu fluorescencyjnego, metalograficznego i polaryzacyjnego – na życzenie konkretnych uczestników – z krótkim wykładem.
  
• 21.30 - Zakończenie zajęć sobotnich.

NIEDZIELA

• 8.00 – Śniadanie.
• 9.00 – 13.00 – "Wykorzystanie Helicon Focus do uzyskania obrazu o poszerzonej głębi ostrości oraz wizualizacji 3D - praktyczne ćwiczenia" – Jacek Kurzawa
  
  Pakiet oprogramowania Helicon Focus Pro + Filter – praktyczne poznanie programu, uczestnicy wykonują zdjęcia mikroskopowe preparatów pod mikroskopem biologicznym i stereoskopowym.
  
  
• a. Najważniejsze funkcje oprogramowania Filter.
• b. Korzystanie z funkcji "Mapa pyłków.
• c. Tworzenie mikropanoramy 2D.
• d. Tworzenie stosu obrazów i łączenie obrazów z różnych płaszczyzn ostrości.
• e. Tworzenie animacji 3D oraz trójwymiarowych obrazów anaglifowych.
• 13.00 - Zakończenie LSMO, prezentacja najciekawszych prac uczestników, wyłonienie zwycięzcy w konkursie na najlepsze zdjęcie i film mikroskopowy, a także na najlepsze zdjęcie reportażowe wykonane w trakcie LSMO.
• 14.00 – Obiad
• 15.00 – Zdanie pokoi oraz wyjazd uczestników.